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Desulforamulus

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Desulforamulus

Desulforamulus ruminis Stamm DLT (Synonym: Desulfotomaculum ruminis)

Systematik
Reich: Bacillati
Abteilung: Bacillota
Klasse: Clostridia
Ordnung: Eubacteriales
Familie: Peptococcaceae
Gattung: Desulforamulus
Wissenschaftlicher Name
Desulforamulus
(Campbell and Postgate 1965) Watanabe et al. 2021

Desulforamulus ist eine Bakteriengattung. Die Arten sind anaerob, tolerieren also keinen Sauerstoff und nutzen die Desulfurikation (Sulfatatmung) zur Energiegewinnung. Hierbei können sie Sulfat, Sulfit und Thiosulfat nutzen. Einige Arten können auch mit Hilfe von Metallen, wie Eisen, Chrom oder Uran, Energie gewinnen. Es sind thermophile ("wärmeliebende") Arten vorhanden. So zeigt D. putei bestes Wachstum bei 64 °C. Die Arten von Desulforamulus kommen in verschiedenen Habitaten vor, darunter heiße Quellen, mit Schwermetallen belastete Böden, tiefe Grundwasserleiter und mikrobiellen Matten, was auf die weite Verbreitung von Desulforamulus-Arten in sauerstoffarmen Gebieten hindeutet.[1] Vor dem Jahr 2021 wurden die Desulforamulus-Arten der Gattung Desulfotomaculum zugeordnet.

Merkmale

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Die Zellen der Desulforamulus- Arten sind stäbchenförmig, 0,5–1,1 μm breit und 2,0–10 μm lang. Die Gram-Färbung variiert zwischen den Arten, das Vorhandensein einer grampositiven Zellwand wurde jedoch elektronenmikroskopisch bestätigt. Die Sporenbildung erfolgt im parazentralen, terminalen oder subterminalen Bereich der Zellen, ohne dass Gasvakuolen entstehen. Der Typstamm Desulforamulus ruminis Stamm ATCC 23193 ist durch peritriche (rund um den Zellkörper angeordneten) Flagellen leicht taumelnd beweglich.[1]

Stoffwechsel und Wachstum

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Arten von Desulforamulus nutzen organische Säuren, Alkohole, Aminosäuren und Kohlenhydrate in Gegenwart von Sulfat, sie führen die Sulfatatmung durch. Dieser Stoffwechselweg wird auch als Desulfurikation bezeichnet. Die Arten nutzen hierbei neben Sulfat noch Thiosulfat und Sulfit als Elektronenakzeptoren. Die Arten Desulforamulus aquiferis und Desulforamulus profundi können verschiedene aromatische Verbindungen verwerten. Die Substrate werden unvollständig oxidiert. Die meisten Arten nutzen H2 als Elektronendonator in Gegenwart von Acetat, einige Arten nutzen auch Formiat. D. profundi wächst chemolithoautotroph auf Wasserstoff (H2) und Kohlendioxid (CO2), es benötigt also hierbei keine weiteren organischen Stoffe.

Desulforamulus ferrireducens kann Eisen (Fe3+), Nitrat und Nitrit als Elektronenakzeptoren verwenden. Auch die Art Desulforamulus reducens ist in der Lage, eine Vielzahl von Metallen (z. B. Fe3+, Mangan (Mn4+), Uran (U6+) und Chrom (Cr6+) als Elektronenakzeptoren zu nutzen.[1] Desulforamulus hydrothermalis nutzt Eisen in Form von Fe(III) und Arsen (As5+) als einzige Elektronenakzeptoren. Hier wird AsO43- zu ASO33- und gleichzeitig Sulfat zu Sulfid reduziert. Hierbei wird ein Mineral gebildet, das Auripigment (Arsentrisulfid, As2S3). Es handelt sich also um einen Prozess der Biomineralisation, also die Bildung von Mineralien durch Mikroorganismen.[2] Die Bildung erfolgt

Auripigment
Arsentrisulfid (Auripigment), Symbole: _ As3+ _S2−

extra- und intrazellulär. Hierbei werden die Elektronen von der Atmungskette auf äußere Membranproteine übertragen und von dort aus auf im Medium vorhandene Metallionen abgegeben.

Desulforamulus ferrireducens kann Glucose nutzen, was unter den sulfatatmenden Bakterien eher selten der Fall ist.[1][2] Die optimale Wachstumstemperatur variiert zwischen den Arten und liegt zwischen 37 und 64 °C. Der optimale pH-Wert für das Wachstum beträgt 7,0–7,5. Natriumchlorid (NaCl) ist für das Wachstum nicht essentiell.[1]

Es folgt eine Tabelle mit Merkmalen einiger Artena:[1]

Spezies D. aeronauticus D. aquiferis D. defluvii D. ferrireducens D. hydrothermalis D. profundi D. putei D. reducens D. ruminis D. varus
Morphologie Gebogene Stäbchen Ovale Stäbchen stäbchenförmig stäbchenförmig Gebogenes Stäbchen stäbchenförmig stäbchenförmig Gebogenes Stäbchen Stäbchen Leicht gebogenes Stäbchen
Zellgröße (μm) 0,5–0,8 × 2,0–5,5 0,7 × 2 0,5–0,7 × 2,0–4,0 0,8–1,1 × 3,5–4,6 0,5 × 2,0–5,0 0,5 × 3 1–1,1 × 2–5 0,8–1,0 × 5–10 0,5–0,7 × 2,2–4,0 1,0 × 2,0–5,0
Beweglichkeit + − − + + − + + + Nr
GC-Gehalt (mol%) 43,8 (LC), 43,6 (Genom) 42,9 (LC), 42,1 (Genom) 45.4 (LC) 49,1 (LC), 45,4 (Genom) 46,8 (LC), 49,5 (Genom) 48,7 (LC), 48,5 (Genom) 47,1 (LC), 48,9 (Genom) 42.3 (Genom) 47.2 (Genom) 52,4 (Tm)
Hauptmenachinon MK-7 Nr MK-7 Nr Nr Nr Nr Nr MK-7 Nr
Optimaler pH-Wert 7.0 7.4 7,5 7,5 7.1 7.2 7,5 7,0–7,2 7,5 7.0
Optimale Temperatur (°C) 37 42 37 50 55 45 64 37 37 50
Optimale NaCl-Konzentration (g l −1) Nr 0–25 5–10 10 Nr 0 Nr 0–20 Nr Nr
Wachstumsfaktorbedarf Vitamine Vitamine Nr Nr − Vitamine, Na2SeO3 − Nr Nr Hefeextrakt
Oxidation des Substrats Unvollständig Unvollständigb Nr Unvollständig Unvollständig Unvollständigb Unvollständig Unvollständig Unvollständig Nr
Verwendete Elektronendonatoren
H₂ / CO₂ +c +d − Nr +e +e +c +e +e +e
Format +c − − +f +e +e +c +e +e −
Acetat − − +g +g − − − − − −
Fettsäuren − − C3 (schwach) Nr − − − C3, C4 − −
Ethanol w + Nr + + + + + + −
Andere Alkoholika − Propanol Nr Nr Butanol und Propanol Butanol (schwach) Methanol (schwach) Butanol und Propanol Propanold −
Laktat − + + − + − + + + +
Pyruvat + + − + + − + + + +
Fumarat − + + − − + Nr − − Nr
Succinat Nr − Nr − − − Nr − − −
Malat − − − − − − − − − −
Andere Glycerin, Hefeextrakt-Pepton-Medium Aromatische Verbindungen (Hydrochinon, Acetophenon, para-Toluylsäuren, 2-Phenylethanol, trans-Zimtsäure, 4-Hydroxybenzaldehyd, Benzylalkohol, Benzoesäure und 4-Hydroxybutylester) Xylose, Glucose, Saccharose, Fructose, Glycerin und Lactose Aromatische Verbindungen (ortho-Toluylsäure, Benzoesäure und 4-Hydroxybutylester) Serin, Alanin, Glukose und Fruktose Fruktose, Mannose, Glycerin
Fermentatives Wachstum (Gärung) Nr Fumarat Fruktose und Glukose Fruktose und Pyruvat Pyruvat Fumarat Pyruvat Pyruvat Laktat und Pyruvat Pyruvat
Disproportionierung reduzierter Schwefelverbindungen Nr Nr Nr Nr Nr Nr Nr Nr Nr Nr
Verwendeter Elektronenakzeptor
Sulfat − + + + + + + + + +
Sulfit + + + + + + + Nr + +
Thiosulfat + + + + + + + + + +
Schwefel W − − − − + − + − +
Andere − − − Fe(III), Nitrat und Nitrit Fe(III) und As(V) − − Nitrat und Metalle − −
  • Symbole: +, positiv; −, negativ; W, schwach; Nr, nicht angegeben; LC, „liquid chromatography“ (Flüssigchromatographie); Tm, „melting temperature“ von DNA, Temperatur, bei der sich die beiden DNA-Stränge trennen (Denaturierung)
  • a Daten von Hagenauer et al. 1997[3], Liu et al. 1997[4], Haouari et al. 2008[5], Junier et al. 2010[6], Ogg und Patel 2011[7], Spring et al. 2012[8], Krishnamurthi et al. 2013[9], Berlendis et al. 2016[10], Visser et al. 2016[11] und Yang et al. 2016[12].
  • b Auf der Grundlage der Genomsequenzen.
  • c Falls Acetat benötigt wird, ist dies nicht dargestellt, aber sehr wahrscheinlich.
  • d Chemolithoautotrophes Wachstum behauptet.
  • e Nur in Gegenwart von Acetat.
  • f Das Medium enthält Hefeextrakt, der möglicherweise für das Wachstum auf Formiat benötigt wird.
  • g Wahrscheinlich Wachstum auf Hefeextrakt und nicht auf Acetat. Aus den Genomdaten lassen sich keine Hinweise auf die Aktivität des Wood-Ljungdahl-Weges gewinnen.

Ökologie

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Die Gattung Desulforamulus umfasst sulfatreduzierende Bakterien (SRB), die hitze-, sauerstoff- und austrocknungsresistente Endosporen bilden. Aufgrund ihrer Fähigkeit, Sporen zu bilden, gedeihen Vertreter dieser Gattung, in Lebensräumen, in denen keine dauerhaft sauerstofffreien Bedingungen herrschen und es auch gelegentlich zu Austrocknung kommt. Daher sind Desulforamulus und die eng verwandte Gattung Desulfosporosinus in der Regel die dominierenden sulfatreduzierenden Bakterien in unterirdischen Umgebungen, die durch menschliche Aktivitäten gestört sind. Hierzu zählen beispielsweise Bergwerke. Außerdem kommen sie an Standorten vor, an denen der Grundwasserspiegel erheblichen saisonalen Schwankungen unterliegt.[13] Dies trifft auch auf die anderen Arten zu, die früher der Gattung Desulfotomaculum zugeordnet wurden.

Valerat
Diothionit

Der Stamm MI-1, der Typstamm von Desulforamulus reducens, wurde aus mit Schwermetallen belasteten Sedimenten der Marinewerft Mare Island in der San Francisco Bay, Kalifornien, isoliert. Desulforamulus reducens (zuerst als Desulfotomaculum reducens geführt) war das erste sulfatreduzierende Bakterium, das mit Uran(VI) als einzigem Elektronenakzeptor wachsen konnte. Es teilt physiologische Eigenschaften sowohl mit der sulfatreduzierenden als auch mit der metallreduzierenden Gruppe von Bakterien.[14] Es kann eine Vielzahl organischer Verbindungen als Elektronendonatoren nutzen, darunter kurzkettige Fettsäuren wie Propionat, Butyrat und Valerat (Pentansäure), Alkohole wie Methanol, Ethanol, n-Propanol und n-Butanol sowie Lactat, Pyruvat und Glucose. Besonders wichtig ist seine Fähigkeit, zahlreiche Elektronenakzeptoren für das Wachstum zu verwenden: Sulfat, Thiosulfat, Dithionit sowie elementaren Schwefel. Es gehört zu den wenigen sulfatreduzierenden Bakterien (SRB), die durch die Kopplung der Oxidation organischer Verbindungen an die Reduktion von Fe(III) zu Fe(II) wachsen können.[15]

Einige Arten von Desulforamulus, wie z. B. D. hydrothermalis, können auch Arsen (As5+) binden und könnten zur Bioremediation eingesetzt werden. Das Gleiche gilt auch für Desulfosporosinus auripigmenti (früher wie auch Desulforamulus innerhalb der gleichen Gattung, Desulfotomaculum, geführt). Diese Art kann As5+ reduzieren und in ihren Zellen aus dem gebildeten As3+ und S6+ das Minderal Auripigment (Arsentrisulfid, As2S3) bilden. Diese Fähigkeit könnte dazu genutzt werden, um Arsen aus dem Grundwasser zu filtern.[16][17]

Die Art Desulforamulus aeronauticus (ursprünglich Desulfotomaculum aeronauticum) wurde aus einer Aluminiumlegierung eines korrodierten Längsträger des Gepäckraums eines Flugzeugs isoliert.[18]

Desulforamulus ruminis wurde zuerst im Pansen von Schafen gefunden.[1][19] Diese Art ist von Interesse, da es sich um eines der wenigen sulfatreduzierenden Bakterien handelt, die aus dem Pansen isoliert wurden. Es wurde das vollständige Genom sequenziert.[8]

Es sind mehrere thermophile ("wärmeliebende") Arten in der Gattung Desulforamulus enthalten. Eine wichtige Rolle der Desulforamulus-Arten in diesen Umgebungen ist die Oxidation organischer Verbindungen bei gleichzeitiger Reduktion von Sulfat und anderen Schwefeloxyanionen zu Sulfid, was die Arten mittels der Sulfatatmung erreichen. Die thermophile Art Desulforamulus hydrothermalis (zuerst Desulfotomaculum hydrothermale) wurde aus einer terrestrischen Thermalquelle in Tunesien isoliert.[20] Es zeigt bestes Wachstum bei 55 °C und toleriert Temperaturen von 40 bis 60 °C. Die Art Desulforamulus putei ist ebenfalls thermophil, es wurde zusammen mit Desulfofundulus luciae (beide Arten zunächst der Gattung Desulfotomaculum zugeordnet) in 2,7 km Tiefe im Trias-Becken von Taylorsville in Virginia isoliert. Die beiden Arten Desulforamulus aquiferis und D. profundi wurden aus Grundwasser im Pariser Becken, Frankreich, in einer Tiefe von 760 m isoliert.[21]

Systematik

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Die Gattung Desulforamulus zählt zu der Familie Peptococcaceae. Die Typusart Desulforamulus ruminis wurde im Jahr 1965 von L. Leon Campbell und John R. Postgate zuerst beschrieben und zu der Zeit noch der Gattung Desulfotomaculum zugeordnet.[22][23]

Aufgrund von genetischen Untersuchungen wurde diese Gattung aufgespalten und die Arten auf verschiedene neue Gattungen verteilt. Hierbei wurde auch vorgeschlagen, die Art "Desulfotomaculum defluvii" zu der Gattung Desulforamulus zu stellen, allerdings wird diese weiterhin als Art von Desulfotomaculum geführt. Das gleich gilt für "Desulforamulus varus", es wird ebenfalls noch der Gattung Desulfotomaculum als Desulfotomaculum varum zugeordnet.[24]

Arten der Gattung Desulforamulus sind sporenbildende, sulfatreduzierende Bakterien. Eine zuverlässige Unterscheidung dieser Gattung von anderen sporenbildenden, sulfatreduzierenden Bakterien erfordert eine 16S-rRNA- oder Genomsequenzierung.

Es folgt eine Liste einiger Arten (Stand 29. April 2026):[25]

Einzelnachweise

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  1. 1 2 3 4 5 6 7 Miho Watanabe, Manabu Fukui, Jan Kuever: Desulforamulus gen. nov. (2025) In: Bergey's Manual of Systematics of Archaea and Bacteria. 1. Auflage. Wiley, 2015, ISBN 978-1-118-96060-8, doi:10.1002/9781118960608.gbm01770.pub2.
  2. 1 2 Michael T. Madigan, John M. Martinko, Jack Parker: Brock - Mikrobiologie. 13. aktualisierte Auflage, Pearson Studium, München 2013, ISBN 978-3-86894-144-9
  3. ↑ Ariane Hagenauer, Hans Hippe, Fred A. Rainey: Desulfotomaculum aeronauticum sp. nov., a Sporeforming, Thiosulfate-Reducing Bacterium from Corroded Aluminium Alloy in an Aircraft. In: Systematic and Applied Microbiology. Band 20, Nr. 1, Januar 1997, ISSN 0723-2020, S. 65–71, doi:10.1016/s0723-2020(97)80049-5.
  4. ↑ Yitai Liu, Tim M. Karnauchow, Ken F. Jarrell, David L. Balkwill, Gwendolyn R. Drake, David Ringelberg, Ronald Clarno, David R. Boone: Description of Two New Thermophilic Desulfotomaculum spp., Desulfotomaculum putei sp. nov., from a Deep Terrestrial Subsurface, and Desulfotomaculum luciae sp. nov., from a Hot Spring. In: International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. Band 47, Nr. 3, 1. Juli 1997, ISSN 1466-5026, S. 615–621, doi:10.1099/00207713-47-3-615.
  5. ↑ O. Haouari, M.-L. Fardeau, J.-L. Cayol, C. Casiot, F. Elbaz-Poulichet, M. Hamdi, M. Joseph, B. Ollivier: Desulfotomaculum hydrothermale sp. nov., a thermophilic sulfate-reducing bacterium isolated from a terrestrial Tunisian hot spring. In: INTERNATIONAL JOURNAL OF SYSTEMATIC AND EVOLUTIONARY MICROBIOLOGY. Band 58, Nr. 11, 1. November 2008, ISSN 1466-5026, S. 2529–2535, doi:10.1099/ijs.0.65339-0.
  6. ↑ Pilar Junier, Thomas Junier, Sheila Podell, David R. Sims, John C. Detter, Athanasios Lykidis, Cliff S. Han, Nicholas S. Wigginton, Terry Gaasterland, Rizlan Bernier‐Latmani: The genome of the Gram‐positive metal‐ and sulfate‐reducing bacterium Desulfotomaculum reducens strain MI‐1. In: Environmental Microbiology. Band 12, Nr. 10, 17. Mai 2010, ISSN 1462-2912, S. 2738–2754, doi:10.1111/j.1462-2920.2010.02242.x.
  7. ↑ Christopher D. Ogg, Bharat K. C. Patel: Desulfotomaculum varum sp. nov., a moderately thermophilic sulfate-reducing bacterium isolated from a microbial mat colonizing a Great Artesian Basin bore well runoff channel. In: 3 Biotech. Band 1, Nr. 3, 9. August 2011, ISSN 2190-572X, S. 139–149, doi:10.1007/s13205-011-0017-5.
  8. 1 2 Stefan Spring, Michael Visser, Megan Lu, Alex Copeland, Alla Lapidus, Susan Lucas, Jan-Fang Cheng, Cliff Han, Roxanne Tapia, Lynne A. Goodwin, Sam Pitluck, Natalia Ivanova, Miriam Land, Loren Hauser, Frank Larimer, Manfred Rohde, Markus Göker, John C. Detter, Nikos C. Kyrpides, Tanja Woyke, Peter J. Schaap, Caroline M. Plugge, Gerard Muyzer, Jan Kuever, Inês A. C. Pereira, Sofiya N. Parshina, Rizlan Bernier-Latmani, Alfons J. M. Stams, Hans-Peter Klenk: Complete genome sequence of the sulfate-reducing firmicute Desulfotomaculum ruminis type strain (DLT). In: Standards in Genomic Sciences. Band 7, Nr. 2, September 2012, ISSN 1944-3277, doi:10.4056/sigs.3226659.
  9. ↑ Srinivasan Krishnamurthi, Stefan Spring, Pinnaka Anil Kumar, Shanmugam Mayilraj, Hans-Peter Klenk, Korpole Suresh: Desulfotomaculum defluvii sp. nov., a sulfate-reducing bacterium isolated from the subsurface environment of a landfill. In: International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. Band 63, Pt_6, 1. Juni 2013, ISSN 1466-5026, S. 2290–2295, doi:10.1099/ijs.0.047662-0.
  10. ↑ Sabrina Berlendis, Magali Ranchou-Peyruse, Marie-Laure Fardeau, Jean-François Lascourrèges, Manon Joseph, Bernard Ollivier, Thomas Aüllo, David Dequidt, Michel Magot, Anthony Ranchou-Peyruse: Desulfotomaculum aquiferis sp. nov. and Desulfotomaculum profundi sp. nov., isolated from a deep natural gas storage aquifer. In: International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. Band 66, Nr. 11, 1. November 2016, ISSN 1466-5026, S. 4329–4338, doi:10.1099/ijsem.0.001352.
  11. ↑ Miho Watanabe, Hisaya Kojima, Manabu Fukui: Review of Desulfotomaculum species and proposal of the genera Desulfallas gen. nov., Desulfofundulus gen. nov., Desulfofarcimen gen. nov. and Desulfohalotomaculum gen. nov. In: International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. Band 68, Nr. 9, 1. September 2018, ISSN 1466-5026, S. 2891–2899, doi:10.1099/ijsem.0.002915.
  12. ↑ Guiqin Yang, Junhui Guo, Li Zhuang, Yong Yuan, Shungui Zhou: Desulfotomaculum ferrireducens sp. nov., a moderately thermophilic sulfate-reducing and dissimilatory Fe(III)-reducing bacterium isolated from compost. In: International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. Band 66, Nr. 8, 1. August 2016, ISSN 1466-5026, S. 3022–3028, doi:10.1099/ijsem.0.001139.
  13. ↑ Pilar Junier, Thomas Junier, Sheila Podell, David R. Sims, John C. Detter, Athanasios Lykidis, Cliff S. Han, Nicholas S. Wigginton, Terry Gaasterland, Rizlan Bernier‐Latmani: The genome of the Gram‐positive metal‐ and sulfate‐reducing bacterium Desulfotomaculum reducens strain MI‐1. In: Environmental Microbiology. Band 12, Nr. 10, Oktober 2010, ISSN 1462-2912, S. 2738–2754, doi:10.1111/j.1462-2920.2010.02242.x, PMID 20482743, PMC 5662442 (freier Volltext).
  14. ↑ Bin Cao, Bulbul Ahmed, Haluk Beyenal: Immobilization of Uranium in Groundwater Using Biofilms. In: Emerging Environmental Technologies, Volume II. Springer Netherlands, Dordrecht 2010, ISBN 978-90-481-3351-2, S. 1–37, doi:10.1007/978-90-481-3352-9_1.
  15. ↑ Pilar Junier, Thomas Junier, Sheila Podell, David R. Sims, John C. Detter, Athanasios Lykidis, Cliff S. Han, Nicholas S. Wigginton, Terry Gaasterland, Rizlan Bernier‐Latmani: The genome of the Gram‐positive metal‐ and sulfate‐reducing bacterium Desulfotomaculum reducens strain MI‐1. In: Environmental Microbiology. Band 12, Nr. 10, 17. Mai 2010, ISSN 1462-2912, S. 2738–2754, doi:10.1111/j.1462-2920.2010.02242.x.
  16. ↑ Freikowski, Dominik. Mikrobiologischer Einfluß auf die Mobilisierung von Arsen in Aquiferen des Nadia-Distrikts, West-Bengalen, Indien. Diss. Karlsruhe, Karlsruher Institut für Technologie (KIT), Diss., 2013, 2013.
  17. ↑ <ref>Dominik Freikowski, Harald Neidhardt, Josef Winter, Zsolt Berner, Claudia Gallert: Effect of carbon sources and of sulfate on microbial arsenic mobilization in sediments of West Bengal, India. In: Ecotoxicology and Environmental Safety. Band 91, Mai 2013, ISSN 0147-6513, S. 139–146, doi:10.1016/j.ecoenv.2013.01.021.
  18. ↑ Ariane Hagenauer, Hans Hippe, Fred A. Rainey: Desulfotomaculum aeronauticum sp. nov., a Sporeforming, Thiosulfate-Reducing Bacterium from Corroded Aluminium Alloy in an Aircraft. In: Systematic and Applied Microbiology. Band 20, Nr. 1, Januar 1997, S. 65–71, doi:10.1016/S0723-2020(97)80049-5.
  19. ↑ L L Campbell, J R Postgate: Classification of the spore-forming sulfate-reducing bacteria. In: Bacteriological Reviews. Band 29, Nr. 3, September 1965, ISSN 0005-3678, S. 359–363, doi:10.1128/br.29.3.359-363.1965.
  20. ↑ O. Haouari, M.-L. Fardeau, J.-L. Cayol, C. Casiot, F. Elbaz-Poulichet, M. Hamdi, M. Joseph, B. Ollivier: Desulfotomaculum hydrothermale sp. nov., a thermophilic sulfate-reducing bacterium isolated from a terrestrial Tunisian hot spring. In: INTERNATIONAL JOURNAL OF SYSTEMATIC AND EVOLUTIONARY MICROBIOLOGY. Band 58, Nr. 11, 1. November 2008, ISSN 1466-5026, S. 2529–2535, doi:10.1099/ijs.0.65339-0.
  21. ↑ Sabrina Berlendis, Magali Ranchou-Peyruse, Marie-Laure Fardeau, Jean-François Lascourrèges, Manon Joseph, Bernard Ollivier, Thomas Aüllo, David Dequidt, Michel Magot, Anthony Ranchou-Peyruse: Desulfotomaculum aquiferis sp. nov. and Desulfotomaculum profundi sp. nov., isolated from a deep natural gas storage aquifer. In: International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. Band 66, Nr. 11, 1. November 2016, ISSN 1466-5026, S. 4329–4338, doi:10.1099/ijsem.0.001352.
  22. ↑ Stackebrandt E (2014): The emended family Peptococcaceae and description of the families Desulfitobacteriaceae, Desulfotomaculaceae, and Thermincolaceae. In: The Prokaryotes: Firmicutes and Tenericutes, 4th edn, E Rosenberg, EF DeLong, S Lory, E Stackebrandt, & F Thompson (eds). Springer, Berlin, Heidelberg; pp 285–290.
  23. ↑ L L Campbell, J R Postgate: Classification of the spore-forming sulfate-reducing bacteria. In: Bacteriological Reviews. Band 29, Nr. 3, September 1965, S. 359–363, doi:10.1128/br.29.3.359-363.1965, PMID 5826606, PMC 441283 (freier Volltext).
  24. ↑ Species: Desulforamulus defluvii. Abgerufen am 1. Mai 2026 (englisch).
  25. ↑ LPSN - Genus: Desulforamulus. Abgerufen am 29. April 2026 (englisch).

Genutzte Literatur

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Weiterführende Literatur

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  • Mohini Pimpalse, Harshida A. Gamit, Natarajan Amaresan: Isolation and Characterization of Genus Desulfotomaculum. In: Practical Handbook on Agricultural Microbiology. Springer US, New York, NY 2022, ISBN 978-1-0716-1723-6, S. 71–75, doi:10.1007/978-1-0716-1724-3_9.
  • Jan Kuever, Fred A. Rainey: Desulfotomaculum (14. September 2015) In: Bergey's Manual of Systematics of Archaea and Bacteria. 1. Auflage. Wiley, 2015, ISBN 978-1-118-96060-8, doi:10.1002/9781118960608.gbm00661.
  • Miho Watanabe, Hisaya Kojima, Manabu Fukui: Review of Desulfotomaculum species and proposal of the genera Desulfallas gen. nov., Desulfofundulus gen. nov., Desulfofarcimen gen. nov. and Desulfohalotomaculum gen. nov. In: International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. Band 68, Nr. 9, 1. September 2018, ISSN 1466-5026, S. 2891–2899, doi:10.1099/ijsem.0.002915.
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